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[吐槽及其它] qPCR试验中,上机读数前加样和混匀的疑惑

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药徒
发表于 2020-9-3 10:55:09 | 显示全部楼层 |阅读模式

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老师们好,最近刚接触qPCR的试验,遇到一些问题想请教一下。

在上机读数前,需要将提取到的DNA和qPCR MIX共同加入到八连排管/PCR板里,混匀离心后放入qPCR仪。疑问如下:
1、说明书里提到,在qPCR MIX的准备这个步骤中,各试剂放在冰上融化。对于试剂盒的qPCR MIX(1ml/管)放在冰上融化后轻微混匀,按需取用,这个我理解了但是,在加样这个步骤中,各试剂置于冰上,轻微振荡混匀,按要求加入八连排管/PCR板里,加样中涉及到标曲、无模版对照、阴性对照、阳性对照、供试品、供试品加标和qPCR MIX,是否意味着,八连排管/PCR板要预先放在冰上,各个样品也预先放在冰上,整个加样过程必须全程保持在冰上
2、加样完毕后,如果八连排管/PCR板是放在冰上的,管/板的外壁一定残留有水分,这个需要用到什么来擦拭干净?有资料提到,八连排管/PCR板本身不能用记号笔做标记,外壁也不能频繁触碰,否则会影响读数,那么用来擦拭外壁水分的工具就显得很重要了

3、各个样品和qPCR MIX都加入到八连排管/PCR板后,上机读数前要确保两种成分,均已得到充分的混匀。八连排管/PCR板要怎么进行振荡?如用到涡旋震荡仪,则要接触管/板的外壁,又会出现上述第2点的担忧。据了解,八连排管/PCR板的专用离心机是有的,而专用震荡仪则没听说过,也可能是我孤陋寡闻


请老师们不吝赐教,感激不尽
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发表于 2020-9-9 16:02:55 | 显示全部楼层
8连管加入样本DNA后直接离心去除壁挂,通过PCR仪扩增就行了,一般不需要振荡就能正常扩增。 至于你说的放在冰上混匀和加样,目前有低温加样的仪器,可以放8连管和离心管,具体我也没用过,不清楚,可以一起学习下。8连管有不同规格的,我们这边一般用200μL的,用记号笔在管壁上靠上方写上编号,不要写到液位下面就可以了。
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药徒
发表于 2020-10-3 09:55:27 | 显示全部楼层
冰上操作理论上能最好的保证酶活性、引物探针的性能。但是这不是绝对的,因为酶里面有保护剂的,短暂的室温放置不会影响酶活性,但是长时间肯定不太好(但是这跟厂家或者酶性能本身也有一定关系)。所以,为了保证万无一失,业内大家都建议置冰上。很多公司有冰盒卖,有可以放0.5/1.5/2.0mL EP管的,也有放8联管或者96孔板的,盒子里面有冷媒可以保证低温,可以避免直接放冰上那种管壁水滴。实际操作中一般就把样品和mix放冰上,室温迅速分装和加样,直接上机跑QPCR了。分装mix的时候,尽量枪头底部靠壁打入,不要有气泡,样品尽量加入底部液体中。如果没有气泡的话,不需要离心&加热时候分子运动自己混匀,但是一般会使用8联管离心机做个short离心把管壁尽可能离下去,同时也是混匀的过程。震荡就不用了,震到管盖了更麻烦!
ABI仪器是顶读信号的,所以尽量不要marker笔标记,会有荧光信号干扰。
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药徒
 楼主| 发表于 2020-10-13 14:03:42 | 显示全部楼层
jiafei4290 发表于 2020-10-3 09:55
冰上操作理论上能最好的保证酶活性、引物探针的性能。但是这不是绝对的,因为酶里面有保护剂的,短暂的室温 ...

原来如此,低温是为了保持试剂本身的性能。
您提到的冰盒,这是一个好办法啊,没成想还有这个工具呢。这令我想起了样本消化步骤中的,恒温金属浴/恒温水浴效果对比的事情,与冰盒比较,就是加热和冷藏的区别了。
太感谢了,看来您在这方面了解很多,有机会一定多请教
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药徒
 楼主| 发表于 2020-10-13 14:08:31 | 显示全部楼层
夜光倾透 发表于 2020-9-9 16:02
8连管加入样本DNA后直接离心去除壁挂,通过PCR仪扩增就行了,一般不需要振荡就能正常扩增。 至于你说的放在 ...

直接离心就怕混匀不够彻底。
我最初是样本和MIX都加完后,把八连管放在96孔PCR管架上,再置于ELISA试验用的微孔板振荡器来混匀的,最后才是离心并上机检测。
非常感谢您的经验分享
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药徒
发表于 2022-5-21 13:19:57 | 显示全部楼层
hangzhouhdjy 发表于 2020-10-13 14:03
原来如此,低温是为了保持试剂本身的性能。
您提到的冰盒,这是一个好办法啊,没成想还有这个工具呢。这 ...

市面上其实很多的。百度下就可以了
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