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[其他] 复方布他磷注射液中维生素B12稳定性问题

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发表于 昨天 14:13 | 显示全部楼层 |阅读模式

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求助求助各位大佬们!!!我们制备的复方布他磷注射液,维B12的含量是5mg/100ml,检测0天维生素B12的含量只有80%,目前知道的是维生素B12对光很敏感,不知道是在配置过程中降解,还是因为维B12用量极微,在称量的时候不精准(采用的先给维B12配成5mg/2ml的浓溶液,再加入到含有正丁醇和布他磷溶液中),求助各位大神其中需要注意的事项或者有没有好点解决方法,感谢感谢!!!
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药徒
发表于 昨天 14:26 | 显示全部楼层
1. 精准度排查(先排除操作误差)  
   - 称量:用十万分之一天平(校准后),避光环境(湿度40%-60%)称取维B12;  
   - 浓配:棕色容量瓶超声助溶,定容后摇匀,转移用棕色移液管(润洗2-3次);  
   - 核对:配完浓溶液后立即测浓度,确认是否合格(排除称量/转移损失)。

2. 全流程防光+防降解
   - 避光:称量、配制、转移均用棕色器具,避光橱内操作,避免日光/日光灯直射;  
   - 配伍:单独测维B12浓溶液稳定性,再分别与布他磷、正丁醇混合测,排查配伍反应;  
   - pH/氧:调节注射液pH至5.0-6.0(维B12稳定区间),配制时通氮气驱氧,减少氧化。

3. 验证定位(空白+回收率试验)
   - 空白回收率:维B12标准品加空白溶剂(无布他磷/正丁醇),测0天含量,排查辅料影响;  
   - 操作回收率:模拟全工艺加标准品,测含量,排查操作环节损失。
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药生
发表于 昨天 16:07 | 显示全部楼层
好——我把可能原因、优先排查的实验和立刻能落地的防护/工艺改进措施都列清楚了,按你现在描述的流程(先配成 5 mg/2 mL 的浓溶液再加入含正丁醇+布他磷的溶液)来给出可操作的检查表和解释,方便你逐条执行并定位是“配制/称量问题”还是“光/化学降解”导致的 20% 损失。

可能的原因(优先级从高到低)
  • 光引起的光化学降解(最常见) —— B12(cobalamin)在溶液中对光高度敏感,尤其在可见光/UV 下会发生转化(如 cyanocobalamin → hydroxocobalamin 等),并且在某些助剂(抗氧化剂、其他维生素)存在时可被加速。
  • 称量/配制精度问题(微量称量误差) —— 你先配 5 mg/2 mL 的浓溶液,如果称的 B12 质量太小、或操作中残留、附着在称量纸/容器上,会引入较大相对误差(尤其是目视加样或用普通分析天平称很小质量时)。
  • 吸附/黏附损失(容器表面) —— B12、有些维生素会吸附到玻璃或某些塑料容器、滤器或注射器内壁,导致回收率下降。近期研究也报告在某些玻璃/HPLC 小瓶上有显著吸附损失。
  • 溶剂/赋形体系影响(溶解度、分配、化学稳定性) —— 你配成浓溶液再加入含正丁醇(n-butanol)的体系:有文献和专利显示一定类型的丁醇有时可用于稳定 B12(专利报道用 butanol 稳定 B12),但具体效果依配方、pH、含水量而异。若溶媒/辅料促使 B12 转相或沉淀,也会导致检测下来的有效含量下降。
  • 分析前处理/测定方法回收率不到位 —— 抽样、稀释、过滤(尤其是用结合吸附风险的滤膜)、光暴露、或标准曲线问题,都可能造成测定偏低。文献里也有报告 B12 与其他维生素/抗氧化剂共同存在会改变测定结果(光/化学相互作用)。


立刻可以做的区分性实验(按顺序做,便于定位原因)每项都要记录时间点(0 min)和样品处理环境(光/暗、室温/冰上)。
  • 称量/配制回收对照(判断是否为称量误差)

    • 用同一批 B12 分两份处理:A)直接称 5 mg(或尽量称更大量如 50 mg,然后稀释到相同终浓度),B)按你现有流程称少量配 5 mg/2 mL。
    • 完全避光(暗室或用铝箔/琥珀瓶)下立即稀释并做测定。
    • 若 A、B 两组初始测定结果差别显著,说明称量/转移/稀释操作存在问题(用量太小、残留在容器壁等)。

  • 光暴露敏感性对照(判断是否在配制/转移时光降解)

    • 同样配两组:一组全程在暗处处理(暗室或红光)、用琥珀瓶保存并用铝箔包裹;另一组按常规明亮环境操作。两组在“配制完成后立即”取样测定。
    • 如果明亮组明显低于暗组,说明光降解在配制/转移阶段发生。文献显示光照下即有快速分解/转化。

  • 加入最终基质后即时回收(判断配方/溶剂相互作用)

    • 把已知浓度的 B12 标准(在暗处制备的)分别加入:a) 仅含有正丁醇的溶液,b) 含布他磷的溶液,c) 含两者的最终配方。
    • 立刻测定(或短时 0~10 min)回收率。若加入某个组分后即时回收降低,说明化学/物理相互作用或溶解/分配变化。专利/文献提示 butanol 可稳定,但具体要验证你配方条件。

  • 吸附损失检测

    • 在相同浓度下,把样品分别置入不同容器(硅化/低吸附玻璃、普通硼硅玻璃、常用塑料注射器、琥珀小瓶),短时静置并测定回收。若某材料回收率低,说明吸附问题明显(HPLC 小瓶尤其可能)。

  • 分析方法回收与稀释线性

    • 空基质加标回收(spike-recovery):把已知量 B12 加入最终制剂基质(在暗),走完整个样品前处理流程(包括过滤、稀释),测定回收率。若回收 < 90%,是分析/前处理问题(滤膜吸附、样品降解、标样配制错误等)。
    • 同时做标准曲线的线性和低量点精密度验证(你用的定量法是否在该低含量范围准确?)


立刻可实施的工程/操作改进(优先级与细节)
  • 全流程避光(最重要、低成本)

    • 配制区、称量台尽量改为低照度(暗室或红光)、操作时使用遮光罩或铝箔包裹容器。制剂转移、稀释、进样全部使用琥珀/棕色玻璃瓶或铝箔包裹的容器,并尽快密封。文献明确指出光是主要诱因。

  • 增加称量精度 / 改用大批量中间液

    • 避免称极小量(例如 < 5 mg)直接配制。推荐:一次称大量(例如 50–500 mg,按实际可行),用容量瓶配成母液,再用移液管取出所需量稀释,这样降低称量相对误差并减少“残留/吸附”影响。
    • 使用合格校准的分析天平或微量天平;用带盖的称量船,尽量减少转移次数。

  • 缩短光暴露时间与操作步骤

    • 将 B12 从包装到加入最终容器的暴露时间降到最短(秒—分钟级而不是十几分钟)。在必要时在冰上操作以减缓热促变。

  • 使用低吸附器材 / 预处理孔径/滤膜

    • 优先使用低吸附(silanized)玻璃或经封闭处理的容器;避免使用已知吸附严重的小体积 HPLC 瓶。滤膜选型要验证(做空白回收试验),如 PVDF、PTFE 等材质的吸附差异大,需验证后选用。文献报告在某些硼硅玻璃上吸附严重。

  • 检查并控制 pH / 还原剂 /氧化环境

    • B12 的光化学转化与溶液 pH、存在的还原剂(如抗坏血酸/ascorbic acid)有关:有些还原剂会加速向不溶或被氧化的产物方向转化。检查配方中是否有抗氧化剂、维生素类或还原性辅料,并做相互作用评估。

  • 若必要,考虑用稳定化策略

    • 文献/专利提到某类 butanol(和某些醇类)能在一定条件下稳定 B12(专利上用 butanol 类作为稳定剂)。但这是条件依赖的,先用小规模实验验证(如上述“加入最终基质后即时回收”试验)再决定是否作为工艺改动采用。不要直接加入未经验证的添加剂到上市配方。


推荐的短期 SOP 修改(可直接下发操作手册)
  • 称量:若必须称少量,使用微量天平并预先校准;优先采用“称大体积母液 → 定量移液”策略。
  • 光学防护:所有含 B12 的操作(称量、溶解、稀释、上样)在暗室或遮光条件下进行;成品/样品用琥珀瓶并铝箔包覆。
  • 样品采集/送检:采样时加贴“避光”标识,运输样品用铝箔包裹并冷藏(如有需要)。
  • 分析:样品前处理全程避光,使用经验证的滤膜和容器,并在方法验证中加入“吸附回收”项目(spike recovery)。
  • 记录:记录每次配制的光照暴露时长、称量批号、容器材质、温度及 pH(如测得)。


如果你现在就想先快速判断“是配制就丢失还是后期降解”,做这个最简单的两步对照(可在半天内出结论)
  • 在暗处配制并立即测定(0 天):若回收 ~100%,说明测定法没问题且配制后立刻并未丢失,问题更可能是配后暴光或储存稳定性
  • 在明亮处按你原流程配制并立即测定(0 天):若回收显著低于暗处,说明配制/转移时的光暴露已经导致损失(需要马上把配制流程改为避光)。


关键参考(用于你向法规/QA/同事说明的载体)
  • Juzeniene A. 等 — Photodegradation of cobalamins in aqueous solutions(综述,指出溶液中 cobalamin 对光敏感)。
  • WHO/EMRO / Baqai J. 等 — Photodegradation of cyanocobalamin(光降解动力学说明、与抗氧化剂相互作用)
  • 专利与文献指出 butanol 类 在某些条件下可用于稳定 B12(需验证)。
  • 关于容器吸附/前处理损失的近期研究(提醒注意硼硅玻璃 HPLC 瓶等吸附问题)。




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