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[生产管理] 干货丨HEK293细胞培养与基因编辑技巧指南

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药徒
发表于 3 天前 | 显示全部楼层 |阅读模式

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本帖最后由 18054268871 于 2025-9-2 17:13 编辑

作为科研领域的“明星细胞系”,HEK293细胞在高通量文库筛选、病毒制备、重组蛋白表达等多种实验场景中应用广泛。其转染效率高、表达稳定、培养体系成熟等优势,使其成为多个研究平台的优选工具。然而,想要在具体项目中充分发挥HEK293细胞的作用,确保实验稳定高效,就必须注重每一个操作环节的规范与细节。本文将从细胞复苏、传代培养、冻存保存,到转染实验及单克隆筛选铺板,全面介绍HEK293细胞的关键操作技术与注意事项,助力科研进程更加顺利!

细胞信息

细胞名称:HEK293(人胚肾细胞)

细胞形态:上皮细胞样,贴壁细胞

细胞培养条件:90%DMEM+10%FBS

气相:空气,95%;二氧化碳,5%

温度:37℃

换液频次:2-3天/次

传代比例:1:3-1:6

细胞生长正常图片:细胞呈不规则多边形或梭形,边缘清晰,类似"铺路石"样排列,细胞边界清晰,单层生长不重叠。

细胞生长状态差图片:细胞形态会发生改变,细胞边缘模糊,拉长、纤维化,边缘模糊、伪足增多,出现空泡或颗粒。(图片请看附件或者官方网站、百家号)

细胞复苏

1. 准备:取7mL完全培养基于离心管中备用

2. 解冻:将细胞从干冰里取出,用镊子夹住盖子放入 37℃水浴中快速晃动(注意:水不能没过盖子),使其在1分钟左右完全融化,直至冰块融化至绿豆大小,停止水浴

3. 离心:将解冻后的细胞悬液转移至离心管中,1100rpm条件下离心4分钟,弃去上清液

4. 重悬与接种:用完全培养基重悬细胞,接种于合适大小的培养皿或培养瓶中

5. 培养:将培养皿或培养瓶置于37℃培养箱中培养,24小时后观察细胞状态及贴壁情况

细胞传代(以T25瓶为例)

1. 当细胞汇合度达到80-90%时可进行传代,传代时在超净台内弃去培养瓶里的培养液,加入5mLPBS洗涤细胞1-2次

2. 加入1mL胰酶,轻轻晃动瓶子并使胰酶完全浸过细胞,将培养瓶放入培养箱孵育 1-2分钟,待在显微镜下观察到大部分细胞变圆变亮,轻轻晃动培养瓶两侧有大部分细胞脱落时,立即终止消化

3. 加入2倍胰酶体积即2mL完全培养基终止消化,然后转移至15mL离心管中

4. 1100 rpm 室温离心 4 分钟,离心结束,弃去上清,加入完全培养基重悬细胞

5. 细胞按照1:3-1:6比例传代,传代第二天观察细胞状态

细胞冻存

1. 收集细胞:按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中

2. 离心:1100rpm条件下离心4分钟,去掉上清

3. 重悬与冻存:用细胞冻存液重悬细胞,按每1mL冻存液含1×10^6个细胞/mL分配到冻存管中,标注好名称、代数、日期等信息

4. 降温与储存:将冻存管置于程序降温盒中,-80℃冰箱中过夜后转入液氮罐内保存

细胞培养注意事项

· 培养基和血清:确保使用正确的基础培养基和加入适量血清,配好的完全培养基需4℃保存,建议2周内使用完毕

· 确保细胞培养环境正常

· 操作前需预热培养基和胰酶至37℃,避免温度应激

· 传代时机: 汇合度 80-90% 时传代,通常每2-3天传代一次

· 细胞传代操作:注意消化时间和胰酶浓度,避免因消化时间过长或过短导致的细胞损伤;避免过度吹打而造成细胞膜的损伤;贴壁不均匀时可轻摇培养瓶使细胞分布均匀

· 细胞不贴壁:检查血清质量;使用包被过的培养器皿;改用含EDTA的0.05%胰酶(如TrypLE™),消化时间缩短至30-60秒

细胞转染关键注意事项

1.细胞状态要求:转染前应确保细胞处于对数生长期(汇合度70%-80%),且活率高于95%(可通过台盼蓝染色法检测)。

2.温和消化:消化细胞时需严格控制时间,避免过度消化导致细胞损伤。

3.充分重悬:操作过程中应将细胞吹打成单细胞悬液,尽量减少细胞团块,以提高转染一致性。

4.试剂混匀:使用转染试剂前须充分涡旋或混匀,确保试剂成分均匀分布。

5.预实验筛选:建议提前进行药物筛选预实验,确定最佳筛选浓度,为转染后筛选做好准备。

6.电转法

电转细胞数量应适中,转染后按合适密度接种于相应培养器皿。

电转前需使用PBS清洗细胞1-2次,彻底去除血清残留,防止离子干扰电转效率。

可通过预实验优化电转电压、波宽等参数。

电转后细胞贴壁率应不低于70%。

严格控制电转操作时间,避免全过程耗时过长影响细胞存活。

7.慢病毒法

正式实验前应预实验确定最佳感染复数(MOI)。

感染时细胞汇合度建议维持在30%-40%,不宜过高。

感染前加入助染剂Polybrene以提高感染效率。

感染24小时后须进行了换液操作。

病毒液应避免反复冻融,以维持病毒活性。

8.脂质体法

应选择适配HEK293细胞的脂质体转染试剂,并通过预实验优化转染条件。

建议提前24小时铺板,使转染时细胞密度处于60%-70%。

配制复合物时,应先使用Opti-MEM稀释DNA,再加入脂质体试剂(反向混合可能导致转染失败)。

稀释后室温静置15-20分钟形成复合物(时间过短复合不充分,过长则毒性增加)。

添加复合物时应沿孔板边缘缓慢逐滴加入,轻轻摇匀,避免直接吹打细胞。

铺单克隆实验注意事项

· 使用对数生长期的细胞进行铺克隆,铺克隆前细胞汇合度建议控制在70%左右

· 铺克隆时细胞活率≥90%

· 提前预温所有试剂(包括培养基、胰酶、PBS)

· 建议使用温和消化试剂(如TrypLE Express)

· 可先进行预实验找到合适的铺克隆梯度,避免单克隆占比太低

· 细胞接种96孔板时需确保细胞分布均匀;外围96孔加入PBS防止蒸发

· 使用“梯度稀释法”进行铺克隆,稀释细胞计数后结果最好落在1*10^6-2*10^6之间




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药师
发表于 3 天前 | 显示全部楼层
学习了,谢谢提供分享。
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药徒
 楼主| 发表于 昨天 13:08 | 显示全部楼层
xqliu 发表于 2025-9-2 18:46
学习了,谢谢提供分享。

感谢您的点评,后期还会有更多干货分享(源井生物)
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